##plugins.themes.bootstrap3.article.sidebar##
##plugins.themes.bootstrap3.article.main##
Анотація
Ліпідний склад молока-сировини є одним з важливих факторів визначення поживної цінності та технологічної придатності молока. Проживаючи в зоні радіоактивного забруднення фермери не завжди мають змогу перевірити рівень секреції радіонуклідів з молоком корови. У всіх населених пунктах дослідних груп тварин вміст 137Cs у відібраних пробах молока перевищував допустиму норму, яка становить 100 Бк/кг. Найвищі значення вмісту 137Cs у молоці корів зафіксовано у с. Старе Село Рокитнівського району (600 Бк/кг). Згідно наших досліджень, місцеві тварини частково адаптувалися до сезонних підвищень радіоактивного фону й їх молочна залоза, відповідно до існуючих стандартів якості, виділяє умовно придатне до споживання молоко. Єдиним фактором, що забороняє споживання такого продукту є рівень цезію-137. Зростання вмісту більше 100 Бк/кг 137Cs у молоці корів викликає зниження відносного вмісту поліненасичених жирних кислот (за рахунок омега-6 жирних кислот) та зміни у співвідношенні омега-3/омега-6 у бік зменшення омега-3 жирних кислот. Не дивлячись на відносну адаптацію лактуючих корів до навантаження радіонуклідами, виявилося, що метаболізм ліпідів у молочній залозу та рівень їх секреції є досить чутливим до рівня 137Cs у молоці. Так, встановлено порушення секреторної функції молочної залози, а саме – обміну ліпідів з 18 атомами Карбону в ланцюзі. При чому, якщо відносний вміст лінолевої кислоти одразу при перевищенні радіоактивного забруднення знижувався в декілька разів, то концентрація стеаринової кислоти вийшовши одразу за фізіологічні межі на рівні біля 110–130 Бк/кг, поступово наростала до рівня 270–330 Бк/кг, після чого виходила на плато до 600 Бк/кг. Виходячи з аналізу особливостей жирнокислотного складу молока корів залежно від вмісту 137Cs, пропонується визначати С18-коефіцієнт ураження молочної залози корів за інтенсивністю 137Cs навантаження їх організму (С18с = (С18:0–C18:2)/100). Визначення С18-коефіцієнту висвітлює дозозалежний вплив навантаження організму корови 137Cs на обмін ліпідів у молочній залозі та катаболізм поліненасичених жирних кислот, зокрема лінолевої. Фактор тривалості впливу навантаження організму радіонуклідами на фізіологічний стан молочної залози, очевидно, є визначальний і відповідає за глибину біохімічних перетворень та ініціацію пероксидних процесів.
##plugins.themes.bootstrap3.article.details##
Посилання
2. Martínez-Padilla E, Li K, Blok Frandsen H, Skejovic Joehnke M, Vargas-Bello-Pérez E, Lykke Petersen I. In Vitro Protein Digestibility and Fatty Acid Profile of Commercial Plant-Based Milk Alternatives. Foods. 2020;9(12):1784. https://doi.org/10.3390/foods9121784
3. Malacarne M, Martuzzi F, Summer A, & Mariani P. Protein and fat composition of mare's milk: some nutritional remarks with reference to human and cow's milk. International Dairy Journal. 2002;12(11):869-877. https://doi.org/10.1016/S0958-6946(02)00120-6
4. Pietrzak-Fiećko R, Kamelska-Sadowska AM. The Comparison of Nutritional Value of Human Milk with Other Mammals’ Milk. Nutrients. 2020;12(5):1404. https://doi.org/10.3390/nu12051404.
5. Barnes LA, Morrow III G, Silverio J, Finnegan LP, & Heitman SE. Calcium and fat absorption from infant formulas with different fat blends. Pediatrics. 1974;54(2):217-221. https://doi.org/10.1542/peds.54.2.217
6. Campbell TC. A Comparison between Human Milk and Cow’s Milk. Available online: https://viva.org.uk/health/a-comparison-between-human-milk-and-cows-milk/ (accessed on 12 May 2023)
7. Danchuk V, Midyk S, Danchuk O, Levchenko А, KorniyenkoV, Ushkalov V, & Bogach M. Fatty acids of milk and the intensity of S. aureus secretion in cows with subclinical mastitis in the steppe of Ukraine. Food Science and Technology. 2022;16(2):63-70. https://doi.org/10.15673/fst.v16i2.2363
8. Ushkalov V, Danchuk V, Midyk S, Voloshchuk N, Danchuk O. Mycotoxins in milk and dairy products. Food Science and Technology. 2020;14(3):137-149. https://doi.org/10.15673/fst.v14i3.1786
9. Tewari K, Kesawat M, Kumar V et al. Role of Gamma Irradiation in Enhancement of Nutrition and Flavor Quality of Soybean. Gamma Rays – Current Insights. 2023. https://doi.org/10.5772/intechopen.1003803
10. Brown K. Learning to read the great Chernobyl acceleration: literacy in the more-than-human landscapes. Current Anthropology. 2019;60(20):198-208. https://doi.org/10.1086/702901
11. Yakubchak OM, Laposha OA, Midyk SV, Taran TV, Zabarna IV. Assessment of the conformity of the methods for Aflatoxin B1 and Deoxynivalenol determination in grain and feeds by method of High-Performance Liquid Chromatography. Methods Objects Chem. Anal. 2018;13(3):121-130. https://doi.org/10.17721/moca.2018.121-130
12. Bayer OV, Yaremchuk OS, Shevchenko LV, Mykhalska VM. The development and validation of a rapid method for the determination of antibiotics in milk by high-pressure liquid chromatography-tandem mass spectrometry. Ukrainian Journal of Ecology. 2017;7(4):569-575. https://doi.org/10.15421/2017_162
13. Periáñez R, Brovchenko I, Jung KT, Kim KO, Liptak L, Little A, Kobayashi T, Maderich V, Min BI, Suh KS, Some considerations on the dependence to numerical schemes of Lagrangian radionuclide transport models for the aquatic environment, Journal of Environmental Radioactivity. 2023;261:107138. https://doi.org/10.1016/j.jenvrad.2023.107138
14. Kaste JM, Volante P, & Elmore AJ. Bomb 137Cs in modern honey reveals a regional soil control on pollutant cycling by plants. Nature Communications. 2021;12(1):1937. https://doi.org/10.1038/s41467-021-22081-8
15. Venturi S. Cesium in Biology, Pancreatic Cancer, and Controversy in High and Low Radiation Exposure Damage—Scientific, Environmental, Geopolitical, and Economic Aspects. International Journal of Environmental Research and Public Health. 2021;18(17):8934. https://doi.org/10.3390/ijerph18178934
16. Kashparova O, Khomutinin Yu, Teien HC, Gudkov I. 2020. Excretion of 137Cs from silver prussian carp (Carassius Gibelio) at 5°C water temperature. Scientific reports of NUBiP of Ukraine. 2020;4(86):1-10. http://dx.doi.org/10.31548/dopovidi2020.04.008
17. Shimaoka C, Kakizaki T, Wada S, Tanaka Y, Abe T, & Natsuhori M. Pharmacokinetics of Stable Caesium after Single Administration of Caesium Chloride in Japanese Black Cattle. Radioisotopes. 2021;70(4):261-270. https://doi.org/10.3769/radioisotopes.70.261
18. Suzuki M, Suzuki H, Ishiguro H, Saito Y, Watanabe S, Kozutsumi T, & Fukumoto M. Correlation of radiocesium activity between muscle and peripheral blood of live cattle depending on presence or absence of radiocontamination in feed. Radiation Research. 2019;192(6):589-601. https://doi.org/10.1667/RR15418.1
19. ASTM E181-10 Standard Test Methods for Detector Calibration and Analysis of Radionuclides. 2010. https://www.astm.org/e0181-10.html
20. Folch J, Leez M, Stanley G. A Simple Method for the Isolation and Purification of Total Lipides from Animal Tissues. J. Biol Chem. 1957; 226 (2):497-501.
21. State hygienic standards. Permissible levels of radionuclides 137Cs and 90Sr in food and drinking water. Hygienic standard of GN 6.6.1.1-130-2006. Official Gazette of Ukraine. 2006;29:142-155. http://search.ligazakon.ua/l_doc2.nsf/link1/RE12719.html