##plugins.themes.bootstrap3.article.main##
Анотація
Анотація. Досягнення біотехнології та її застосування у виробництві харчових продуктів дозволяють не тільки розширити асортимент, а також забезпечити дотримання повноцінного та функціонального харчування людини. Через сучасний економічний стан підприємства, що виробляють харчові продукти із сировини тваринного походження шукають нові нетрадиційні джерела сировини, які здатні забезпечити потреби виробника, а саме: високі функціонально-технологічні властивості сировини, конкурентоспроможність продукту на ринку, економічність, а також бути затребуваним серед споживача. Відомо, що похідні шкіри тварин мають неоднорідну структуру з усіма класами тканин представлені (сполучна, епітеліальна, гладком’язова та нервова).
Шкіра сільськогосподарських тварин, особливо свиняча, містить диференційовані основні матричні структури, включаючи клітини, свинячу шерсть, фолікули та супутні мікрокомпоненти, які не тільки визначають реологічні властивості сировини, але також корелюють з властивостями міцності волокон капілярно-пористої структури досліджуваної матриці.
Колаген – найважливіший білок, що виробляється людським організмом [1]. Він в основному утворений амінокислотою гліцином (33%), проліном та гідроксипроліном (22%) (первинна структура) у триплексній спіралі, яка утворена трьома ланцюгами. Кожен альфа-ланцюг складається приблизно з 1014 амінокислот з молекулярною масою близько 100 кДа. Ці ланцюги згорнуті в ліву спіраль з трьома амінокислотами на виток (вторинна структура). Ланцюги скручуються один навколо одного в потрійну спіраль, утворюючи жорстку структуру (третинна структура). Суперспіраль являє собою основну структуру колагену (четвертинна структура). Ця структура колагену дуже стабільна завдяки внутрішньомолекулярним водневим зв'язкам між гліцином у сусідніх ланцюгах. Молекула колагену утворена з потрійної спіральної області та двох неспіральних областей на обох кінцях спіральної структури з молекулярною масою 300 кДа, довжиною 280 нм та діаметром 1,4 нм. Основними джерелами сировини є свиняча шкіра, шкури великої рогатої худоби та рибні залишки. Екстракцію можна проводити кислотною, лужною обробкою або комбінованим способом. Екстракцію за кислотної обробки зазвичай застосовують для екстракції колагену I типу з тканин свинячого або риб'ячого шкірного походження . Оцтова кислота є найпоширенішим реагентом для екстракції колагену. В роботі описана Можливість використання молочної кислоти. Концентрація цієї кислоти впливатиме на кінцеве значення pH, змінюючи електростатичну взаємодію та структуру. Вона також визначає розчинність та екстракційну здатність з тканин тварин. Поєднання кислотної та ферментативної обробки забезпечує вищий та ефективніший процес екстракції колагену. Цей фермент впливає на телопептидну область в молекулі колагену, збільшуючи його розчинність у кислому середовищі. Використання ультразвуку як альтернативного методу екстракції колагену не змінює молекулу та полегшує ферментативну дію. Ця технологія може бути застосована для різних видів сировини, таких як шкіра риби та сухожилля великої рогатої худоби, для отримання вищих концентрацій колагену за коротший час екстракції. Умови попередньої обробки, діаліз та джерело екстракції є основними факторами, що визначають характеристики кінцевого продукту, такі як молекулярна маса, амінокислотний склад та молекулярна структура.
Це дослідження зосереджено на розв'язанні проблеми створення вітчизняних білкових добавок зі свинячої шкіри з високими функціонально-технологічними властивостями. З цією метою у представленій роботі проведено порівняльний аналіз методів отримання таких добавок. У даній роботі розглядаються традиційні та сучасні методи одержання колагену, їх ефективність, переваги та обмеження і описано інноваційний метод отримання добавки для м’ясної промисловості. Також висвітлено питання екологічності та перспективи розвитку технологій.
##plugins.themes.bootstrap3.article.details##
Посилання
2. Wang, J., Wang, H., Shi, X., & Xu, L. (2026). Research progress on extraction methods, bioactivity, and food industry applications of collagen from livestock and poultry slaughter by-products: a review. Journal of Food Measurement and Characterization. https://doi.org/10.1007/s11694-025-03965-5
3. Mittal, A., Collins, C., Madden, L., & Brunton, N. (2025). Collagen from Bovine Omentum: Extraction and Characterization. Foods, 15(1), 44. https://doi.org/10.3390/foods15010044
4. Maistrenko, L., Iungin, O., Pikus, P., Pokholenko, I., Gorbatiuk, O., Moshynets, O., Okhmat, O., Kolesnyk, T., Potters, G., & Mokrousova, O. (2022). Collagen Obtained from Leather Production Waste Provides Suitable Gels for Biomedical Applications. Polymers, 14(21), 4749. https://doi.org/10.3390/polym14214749
5. Nian-Ting Hou, & Bing-Huei Chen. (2023). Extraction, purification and characterization of collagen peptide prepared from skin hydrolysate of sturgeon fish. Food Quality and Safety, 7. https://doi.org/10.1093/fqsafe/fyad033
6. León-López, A., Morales-Peñaloza, A., Martínez-Juárez, V. M., Vargas-Torres, A., Zeugolis, D. I., & Aguirre-Álvarez, G. (2019). Hydrolyzed Collagen—Sources and Applications. Molecules, 24(22), 4031. https://doi.org/10.3390/molecules24224031
7. Matinong, A. M. E., Chisti, Y., Pickering, K. L., & Haverkamp, R. G. (2022). Collagen Extraction from Animal Skin. Biology, 11(6), 905. https://doi.org/10.3390/biology11060905
8. Chen, Q., Pei, Y., Tang, K., & Albu-Kaya, M. G. (2023). Structure, extraction, processing, and applications of collagen as an ideal component for biomaterials - a review. Collagen and Leather, 5(1). https://doi.org/10.1186/s42825-023-00127-5
9. Harris, M., Potgieter, J., Ishfaq, K., & Shahzad, M. (2021). Developments for Collagen Hydrolysate in Biological, Biochemical, and Biomedical Domains: A Comprehensive Review. Materials, 14(11), 2806. https://doi.org/10.3390/ma14112806
10. Li, L., & Zhang, M. (2023). The Efficient Extraction Method of Collagen from Deteriorated Leather Artifacts. Polymers, 15(16), 3459. https://doi.org/10.3390/polym15163459
11. Mayer-Laigle, C., Blanc, N., Rajaonarivony, R., & Rouau, X. (2018). Comminution of Dry Lignocellulosic Biomass, a Review: Part I. From Fundamental Mechanisms to Milling Behaviour. Bioengineering, 5(2), 41. https://doi.org/10.3390/bioengineering5020041
12. Martinez, V., Stolar, T., Karadeniz, B., Brekalo, I., & Užarević, K. (2022). Advancing mechanochemical synthesis by combining milling with different energy sources. Nature Reviews Chemistry. https://doi.org/10.1038/s41570-022-00442-1
13. Chen, Q., Pei, Y., Tang, K., & Albu-Kaya, M. G. (2023a). Structure, extraction, processing, and applications of collagen as an ideal component for biomaterials - a review. Collagen and Leather, 5(1). https://doi.org/10.1186/s42825-023-00127-5
14. Extraction Methods, Characterization and Biomedical Applications of Collagen: a Review. (2021). Biointerface Research in Applied Chemistry, 11(5), 13587–13613. https://doi.org/10.33263/briac115.1358713613
15. Gutierrez-Canul, C. D., Can-Herrera, L. A., Ramírez-Rivera, E. d. J., Prinyawiwatkul, W., Sauri-Duch, E., Moo-Huchin, V. M., & Hernández-Núñez, E. (2025). A Review of Classical and Rising Approaches the Extraction and Utilization of Marine Collagen. BioTech, 14(2), 26. https://doi.org/10.3390/biotech14020026
16. Kendler, S., Kobbenes, S. M. M., Jakobsen, A. N., Mukhatov, K., & Lerfall, J. (2023). The application of microwave and ultrasound technologies for extracting collagen from European plaice by-products. Frontiers in Sustainable Food Systems, 7. https://doi.org/10.3389/fsufs.2023.1257635
17. Chen, W., Yu, D., Guan, L., & Cao, H. (2025). Studies on the Structure and Properties of Ultrasound-Assisted Enzymatic Digestion of Collagen Peptides Derived from Chinemys reevesii Skin. Foods, 14(17), 2960. https://doi.org/10.3390/foods14172960