Food Science and Technology

ISSN-print: 2073-8684
ISSN-online: 2409-7004
ISO: 26324:2012
Архiви

НУТРІТИВНІ ВЛАСТИВОСТІ НАСІННЯ СПОРІДНЕНИХ ВИДІВ PHASEOLUS L.

##plugins.themes.bootstrap3.article.main##

O. Bezuhla
https://orcid.org/0000-0002-1458-1630
L. Kobyzeva
https://orcid.org/0000-0002-5549-4437
S. Sylenko
V. Pozniakov
T. Sheliakina
https://orcid.org/0000-0003-2255-8550

Анотація

Анотація. Досліджено нутрітивні властивості споріднених видів квасолі Phaseolus multiflorus Lam., P. acutifolius A. Grey та P. lunatus L. з базової колекції квасолі  Національного центру генетичних ресурсів рослин України. Встановлено, що вивчені споріднені види розподілилися за зниженням їх рівня поживності: P. multiflorus Lam., P. lunatus L., P. acutifolius A. Grey. Зразки  P. multiflorus Lam. мали найбільший вміст білка (в середньому 25,10% на суху речовину) та  найбільшу антиоксидантну активність (6,09–6,16 еквівалент хлорогенової кислоти мг/г насіння). Зразки P. lunatus L. значно поступаються за вмістом білка в насінні (в середньому 19,39 %) квасолі  багатоквітковій, а антиоксидантна активність подібна до багатоквіткової з однаковим забарвленням насіннєвої оболонки (1,05–2,34). За вмістом білка в насінні зразки  P. acutifolius A. Grey мають найменший вміст білка (в середньому 17,43%). Антиоксидантна активність цього виду варіює на рівні 1,27–1,62 еквіваленту хлорогенової кислоти мг/г насіння. Аналіз розварювання насіння  зразків споріднених видів квасолі показав, що вони розподілилися за зростанням часу розварювання: P. acutifolius A. Grey, P. lunatus L., P. multiflorus Lam. Установлено, що швидкість розварювання зрілого насіння має від’ємну кореляційну залежність від поживних властивостей споріднених видів квасолі. Аналіз коефіцієнтів шляху визначив, що на антиоксидантну активність мають прямий позитивний вплив товщина насіннєвої оболонки та прямий негативний вплив вміст білка в сухому насінні. На час розварювання насіння прямий позитивний вплив має вміст білка в ньому.

Ключові слова:
Phaseolus multiflorus Lam., P. acutifolius A. Grey, P. lunatus L., поживність, розварюваність, вміст білка, антиоксидантна активність

##plugins.themes.bootstrap3.article.details##

Як цитувати
Bezuhla, O., Kobyzeva, L., Sylenko, S., Pozniakov, V., & Sheliakina, T. (2024). НУТРІТИВНІ ВЛАСТИВОСТІ НАСІННЯ СПОРІДНЕНИХ ВИДІВ PHASEOLUS L. Food Science and Technology, 18(3). https://doi.org/10.15673/fst.v18i3.3020
Розділ
Хімія харчових продуктів і матеріалів. Нові види сировини

Посилання

1. The Labyrinth of Mandrake [electronic source]: http://mag.org.ua/rast/trava668.html
2. Câmara CRS, Urrea CA, Schlegel V, Pinto Beans (Phaseolus vulgaris L.) as a Functional Food: Implications on Human Health. Agriculture. 2013;3:90-111. https://doi.org/10.3390/agriculture3010090
3. Tsuda T, Osawa T, Nakayama S, Awakishi S, Ohshima K. Antioxidant activity of pea bean (Phaseolus vulgaris L.) extract. Journal of the American Oil Chemists' Society. 1993;70:910-913. https://doi.org//10.1007/bf02545353
4. Onyeneho SN, Hettiarachchy NS, Effect of navy bean hull extract on the oxidative stability of soy and sunflower oils. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 2005;39(10):1701-1704 https://doi.org/10.1021/jf00010a600
5. Website of Prof. Konovalova OYu [electronic source]: http://www.pharmacognosy.com.ua/index.php/vashe-zdorovoye-pitanije/zlakovyje-i-bobovyje/fasol UM, Lajolo FM. Composition and digestibility of albumin, globulins, and glutelins from Phaseolus vulgaris Agric Food Chem. 1981 Sep-Oct;29(5):1068-74. https://doi.org/10.1021/jf00107a043
6. Guzmán-Uriarte ML, Sánchez-Magaña LM, Angulo-Meza GY, Cuevas-Rodríguez EO, Gutiérrez-Dorado R, Mora-Rochín S, Milán-Carrillo J, Valdez-Ortiz A, Reyes-Moreno C. Solid State Bioconversion for Producing Common Bean (Phaseolus vulgaris L.) Functional Flour with High Antioxidant Activity and Antihypertensive Potential. Food and Nutrition Sciences. 2013;4:480-490. https://doi.org/10.4236/fns.2013.44061
7. Gómez-Favela MA, Reyes-Moreno C, Milán-Carrillo J, Partida-Preciado RA, Espinoza-Moreno RJ, Preciado-Ortiz R, Gutiérrez-Dorado R. Botana saludable libre de gluten con alto valor nutricional y nutracéutico elaborada con una mezcla de granos extrudidos subutilizados (maíz de calidad proteínica/frijol tépari). Acta Universitaria. México. 2021;31.
8. Lin J-Y. Tang C-Y. Determination of total phenolic and flavonoid contents in selected fruits and vegetables, as well as their stimulatory effects on mouse splenocyte proliferation. Food Chemistry. 2007;101(1):140-147. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2006.01.014
9. Nijveldt RJ, van Nood E, van Hoorn DEC, Boelens PG, van Norren K, van Leeuwen PAM. Flavonoids: a review of probable mechanisms of action and potential applications. The American Journal of Clinical Nutrition. 2001;74 (4):418-425.h ttps://doi.org/10.1093/ajcn/74.4.418
10. Tsuda T, Osawa T, Nakayama S, Awakishi S, Ohshima K. Antioxidant activity of pea bean (Phaseolus vulgaris L.) extract. Journal of the American Oil Chemists' Society. 1993;70:910-913. https://doi.org/10.1007/bf02545353 •
11. Onyeneho SN, Hettiarachchy NS, Effect of navy bean hull extract on the oxidative stability of soy and sunflower oils. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 1991;39:1701-1704. https://doi.org/10.1021/jf00010a600
12. Broeck HC, Londono DM, Timmer R, Smulders MJM, Gilissen LJW, Meer IM. Profiling of nutritional and health-related compounds in oat varieties. Foods. 2016;5(2):2-11.https://doi.org/10.3390/foods5010002
13. Li XP, Li MY, Ling AJ, Hu XZ, Ma Z, Liu L, Li YX. Effects of genotype and environment on avenanthramides and antioxidant activity of oats grown in northwestern China. Journal Cereal Science. 2017; 73:130-137. https://doi.org/10.1016/j.jcs.2016.12.005
14. Dos Santos GG, Ribeiro ND, Masiero SМ. Evaluation of common bean morphological traits identifies grain thickness directly correlated with cooking time. Scientific Articles. Pesquiisa Agropecuaria Tropical. 2016;46 (1):35-42. https://doi.org//10.1590/1983-40632016v4638191
15. Ewart A.J. 0n the Lovgevity of Seeds. Proceedings Rogal Sosietg Victoria. 1908;21(1):1-210.
16. https://ia601605.us.archive.org/27/items/proceedingsofroy21roya/proceedingsofroy21roya.pdf
17. Gouveia CSS, Freitas G, de Brito JH, Slaski JJ, de Carvalho MÂAP. Nutritional and Mineral Variability in 52 Accessions of Common Bean Varieties (Phaseolus vulgaris L.) from Madeira Island. Agricultural Sciences. 2014;5:317-329. https://doi.org/10.4236/as.2014.54034
18. S´aez-plaza P, Michałowski T, Navas MJ, Asuero AG, Wybraniec S. An overview of the Kjeldahl method of nitrogen determination. Part I. Early history, chemistry of the procedure, and titrimetric finish. Critical Reviews in Analytical Chemistry. 2013;43(4):178-223. https://doi.org/10.1080/10408347.2012.751786.
19. S´aez-plaza P, Navas MJ, Wybraniec S, Michałowski T, Asuero AG. An overview of the Kjeldahl method of nitrogen determination. Part II. Sample preparation, working scale, instrumental finish, and quality control. Critical Reviews in Analytical Chemistry. 2013;43(4):224-272. https://doi.org/10.1080/10408347.2012.751787
20. Arabshahi S, Urooj A. Antioxidant Properties of Various Solvent Extracts of Mulberry morusindica L. Leaves. Food Chemical. 2007;102:1233-1240. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2006.07.013
21. Bonoli M, Verardo V, Marconi E, Caboni MF. Antioxidant phenols in barley (Hordeum vulgare L.) flour: comparative spectrophotometric study among extraction methods of free and bound phenolic compounds/ Journal Aagricultural Food Chemical. 2004;52:5195-200. https://doi.org/10.1021/jf040075c
22. Zhou K, Yu L. Effects of extraction solvent on wheat bran antioxidant activity estimation. Lebensm.-Wiss. u.-Technol. 2004;37:717-721. https://doi.org/10.1016/j.lwt.2004.02.008
23. Pozdnyakov VV, Vasilenko AO. Use of test systems to assess the total antioxidant activity in seeds. Selektsiia i Nasinnytstvo. 2017;112:153-163. https://doi.org/10.30835/2413-7510.2017.120443
24. Methods of qualification examination of plant varieties for suitability for dissemination in Ukraine. Methods for determining plant product quality parameters. 2016:58-62. https://sops.gov.ua/uploads/page/5a5f41997447d.pdf [in Ukrainian]
25. Methodological guidelines for studying genetic resources of legumes. L.N. Kobyzeva, O.M. Bezuhla, S.I. Sylenko, et al. NAAS, Plant Production Institute named after V.Ya. Yuriev. Kharkiv: Stil-Izdat. 2016:84 [in Ukrainian]
26. Dewey D.R., Lu K.H. A correlation and pathcoefficient analysis of components of crested wheatgrass seed Production. Agron Journal. 1959;51(9),515-518. https://doi.org/10.2134/agronj1959.00021962005100090002x
27. Palupi HT, Estiasih T, Yunianta, Sutrisno A. Physicochemical and protein characterization of lima bean (Phaseolus lunatus L) seed. Food Research. 2022;6 (1):168-177. https://doi.org/10.26656/fr.2017.6(1).107
28. Chávez-Servia JL, Heredia-García E, Mayek-Pérez N, Aquino-Bolaños EN, Hernández-Delgado S, Carrillo-Rodríguez JC, Gill-Langarica HR, Vera-Guzmán AM. Diversity of Common Bean (Phaseolus vulgaris L.) Landraces and the Nutritional Value of their Grains. Grain legumes. 2016. https://doi.org/10.5772/63439
29. Nyau V, Prakash S, Rodrigues J, Farrant J. Screening Different Zambian Market Classes of Common Beans (Phaseolus vulgaris) for Antioxidant Properties and Total Phenolic Profiles. Journal of Food and Nutrition Research. 2016;4 (4):230-236. https://doi.org/10.12691/jfnr-4-4-6
30. Dykes L., Rooney LW. Phenolic Compounds in Cereal Grains and Their Health Benefits. Cereal Foods World. 2007;32(3):105-111. https://nulifemarket.com/wp-content/uploads/2016/02/CFWPhenolicCompoundsCerealGrainsTheirHealthBenefits.pdf
31. Mattila P, Pihlava JM, Hellstrom J. Contens of phenolic acids, alkyl and alkenylresorcinols, and avenanthramides in commercial grain products. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 2005;5:8290. https://doi.org/10.1021/jf051437z
32. Bezugla О.N., Pozdniakov V.V., Kobyzeva L.N., Boguslavskiy R.L., Antsyferova O.V. «Antioxidant activity of Phaseolus L. species seeds with different coat color». Žemės ūkio mokslai. Agricultural Sciences. 2018;25(3):117-124. https://doi.org/10.6001/zemesukiomokslai.v25i3.3794
33. Oomah BD, Corbe´ AL, Balasubramanian P. Antioxidant and Antiinflammatory Activities of Bean (Phaseolus vulgaris L.) Hulls. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 2010;58: 8225-8230. https://doi.org/10.1021/jf1011193
34. Funome H, Pangastuti A, Setyaningsih R. The effect of heat treatment on antioxidant activity of ethyl acetate extracts Arbila beans from Kapan, East Nusa Tenggara. IOP Conference Series: Materials Science and Engineering. 4th International Conference on Advanced Material for Better Future 2019 (ICAMBF 2019) Surakarta, Indonesia. 2019;858:012028. https://doi.org/10.1088/1757-899X/858/1/012028
35. Vus NO, Kobyzeva LN, Pozdniakov VV, Antsyferova OV. Antioxidant activity in chickpea accessions in the Eastern Forest-Steppe of Ukraine. International Scientific and Practical Conference "State-of-the-Art Technologies to Enhance the Genetic Potentials of Plants" Kharkiv, July 4–5, 2018:171-172. [in Ukrainian]
36. Silva-Cristobal L, Osorio-Díaz P, Tovar J, Bello-Pérez LA. Chemical composition, carbohydrate digestibility, and antioxidant capacity of cooked black bean, chickpea, and lentil Mexican varieties Composición química, digestibilidad de carbohidratos, y capacidad antioxidante de variedades mexicanas cocidas de frijol negro, garbanzo, y lenteja, CyTA. Journal of Food. 2010;8:1:7-14. https://doi.org/10.1080/19476330903119218
37. Lee C, Han D, Kim B, Baek N, Baik BK. Antioxidant and antihypertensive activity of anthocyanin-rich extracts from hulless pigmented barley cultivars. International Journal of Food Science @ Technology. 2013;48(5):984-991. https://doi.org/10.1111/ijfs.12050
38. Gong LX, Jin C, Wu LJ, Wu XQ, Zhang Y. Tibetan hull-less Barley (Hordeum vulgare L.) as a potential source of antioxidants. Cereal Chem. 2012;89(6):290-295 https://doi.org/10.1094/cchem-03-12-0029-r
39. Garcés-Rimón M; Morales D, Miguel-Castro M. Potential Role of Bioactive Proteins and Peptides Derived from Legumes towards Metabolic Syndrome. Nutrients. 2022;14:5271. https://doi.org/10.3390/nu1424527
40. Heredia-Rodríguez L, Gaytán-Martínez M, Morales-Sánchez E, Garza-Juárez AdeJ, Urias-Orona V, González-Martínez BE, López-Cabanillas Lomelí M, Vázquez-Rodríguez JA. Nutritional and technological properties of Tepary bean (Phaseolus acutifolius) cultivated in Mexican Northeast. Czech Journal of Food Sciences. 2019;37(1):62-68. https://doi.org/10.17221/331/2017-CJFS
41. López-Ibarra C, de Jesús Ruiz-López F, Bautista-Villarreal M, Báez-González JG, Romero BAR, González-Martínez BE, Lomelí ML-C, Vázquez-Rodríguez JA. Protein Concentrates on Tepary Bean (Phaseolus acutifolius Gray) as a Functional Ingredient: In silico Docking of Tepary Bean Lectin to Peroxisome Proliferator-Activated Receptor Gamma. Frontiens in Nutrion. 2021;8:661463. https://doi.org/10.3389/fnut.2021.661463
42. Osuna-Gallardo EI, Cuevas-Rodríguez EO, Sepúlveda-García CI, Reyes-Moreno C, León-López L, Han R, Hernández-Álvarez AJ. Impact of Cooking and Extrusion Processing on Nutritional, Antinutritional, and Techno-Functional Characteristics of Indigenous Bean (Phaseolus coccineus). Food Science Technology. 2023;3:1835-1853. https://doi.org/10.1021/acsfoodscitech.2c00416
43. Adriana C, Madoșă E, Sorina P, Giancarla V, Sărac I, Ciulca S. Genetic parameters, correlation and path coefficient analysis for cooking quality and its attributing traits in dry bean. Journal of Horticulture, Forestry and Biotechnology. 2022;26(2):93-97. www.journal-hfb.usab-tm.ro
44. Önder M, Kahraman A, Ceyhan E. Correlation and Path Analysis for Yield and Yield Components in Common Bean Genotypes (Phaseolus vulgaris L.). Ratarstvo i povrtarstvo. 2013;50(2):14-19. https://doi.org/10.5937/ratpov50-3958
45. Abd E, Jasim Al-h, Esho KB. Correlation and Path Coefficient Analysis in Some Varieties of Phaseolus (Phaseolus vulgaris L.). International Journal of Science and Research. 2020;9(8):948-952. https://doi.org/10.21275/SR20812140529
46. Prudencio S, Christ D, Sampaio SC, Coelho SRM. Storage-induced changes in protein interactions and protein solubility in common beans. Journal of Food Agriculture and Environment. 2011;10(2):44-48.